电印迹技术一直是最常见的把蛋白质从凝胶转移到薄膜的方法。与其他早期技术相比,其主要优点是速度快,以及能够保证转移的完全性。
在实现方面,它可以通过在缓冲液完全浸入凝胶及膜的三明治结构的湿式转印或通过将凝胶和膜的夹层放置在浸泡过转移缓冲液的吸水介质之间进行转移的半干式转印来达成。
对于湿式转移的基本要求是将三明治结构放置在带有铂丝电极的缓冲器皿内进行(图1)。有许多不同的仪器可以将蛋白质(或其他大分子)从凝胶横向转移到膜上。这其中大部分的仪器都是基于托宾的设计 (Towbin al.1979):也就是将垂直的不锈钢/铂电极置于在一个大槽内。
通常的情况下用于转印的聚合物膜在阳极一侧,但这不是绝对的,对于某些特殊形式的转印,蛋白或其他大分子物质会向阴极移动,这时膜应在阴极一侧。
目前实验室常用的湿式转印槽,其外槽通常为有0.5-10L容量的塑料器皿,并有专门的结构可以放置并固定内槽或组件,配有冷却装置。其电极为曲折缠绕的金属线或板式电极,电极反向于三明治结构的一面通常都被很仔细的包覆起来,跟外部缓冲液隔开,以避免不必要的电流损失,电极通常通过内槽上的结构与外部电源相连接。整体式的内槽下端为开放式,通常支持放入多个转印用三明治组件。金属线的直径及板式电极的厚度通常在0.2-2mm之间,两极的间距通常大于4cm。阳极的材质选择为铂,钛,铑或其合金,阴极的选择除了以上几种还可以选择一些耐腐蚀的金属材料,如不锈钢。对于无整体内槽结构的湿转槽,通常会将各组件分别插入外槽,包括三明治结构,电极,冷却结构。
最经典的托宾式湿式转印配方为:25mM Tris,192mM Glycine,1mM EDTA,10-20%甲醇。通常情况下不需要调节pH值,pH值在8.3附近。
对于缓冲介质的选择阳离子缓冲介质通常为有机胺类缓冲剂,主要包括Tris(三羟基甲氨基甲烷),Bis-tris(二(2-羟乙酸)亚胺基三(羟甲基)甲烷),Bis-Tris Propane(双[三(羟甲基)氨基丙烷]),TEA(三乙醇胺),其浓度通常为20-200mM(毫摩尔每升)。阴极离子缓冲介质的主要成分是两性缓冲剂,可以包括 Bicine(N,N-双(2-羟乙基)甘氨酸),HEPES(2-羟乙基哌嗪乙磺酸),Glycine(甘氨酸),6-氨基己酸,BES(N-双(2-羟乙基)-2-氨基乙磺酸),CAPS(3-(环已基)-1-丙磺酸)其中的一种或多种的混合溶液,浓度为20-200mM(毫摩尔每升)。也可以选择商品化的转印缓冲液。
两极缓冲液均需加入一定成分的有机溶剂,主要包括甲醇,乙醇,2-丙醇。加入有机试剂的目的在于防止凝胶的膨胀,以减少低分子量蛋白的流失。订阅其最新的ACE产品信息、动态信息等尽在您的指尖。
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